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Inhalt
Experimentelle Entwicklungsbiologie bei Xenopus
Prof. Dr. Kurt Br„ndle, Hans-Peter Rangol
Sommersemester 2000
Inhalt
Arbeitstechniken
Techniken und Methoden
Herstellen der Instrumente und Lösungen
Instrumente
Physiologische Kochsalzlösungen
Sterilisieren von Instrumenten
Wasserkühlung
Operationstechniken
Vorbereitung des Geleges
Isolierung einzelner Keime
Enthüllen der Keime
Entfernen der Vitellinmembran
Umsetzen von Keimen und Keimteilen
Wachsschalentechnik
Schneiden mit Glas- und Kugelnadel
Aufzucht von operierten Keimen
Histologie
Fixierungen
Formolfixierung
Bouin-Fixierung
FEA - Fixierer
Glutaraldehyd-Fixierung
Einbettung und Anfertigen von Dünnschnitten
Paraplastschnitte
Gefrierschnitte
Pufferlösungen
Trispuffer aka Tris/HCL
PBS
Färbemethoden
Toluidinblau
Hämatoxylin-Eosin
Pikroblauschwarz
Färbung mit Boraxkarmin
HRP-Markierungen retinaler Nervenfasern
Co-DAB-Methode
Herstellung von Totalpräparaten (Spalteholz-Präparate)
Fixieren und Bleichen nach Spalteholz
Fixieren und Bleichen nach Lundvall
Färben
Aufgabenstellungen
Entwicklungsgeschichten
Normalentwicklung von
Xenopus laevis
Normalentwicklung von Insekten
Hühnchen
Experimente zur
Xenopus
-Entwicklung
Pflichtversuche
Vitalfärbungen
Transplantation der dorsalen Urmundlippe
Protokollversuche
Versuche mit der Neuralleiste
Versuche zur Herzentwicklung
Versuche mit der Augenanlage
Versuche zur Entwicklung der optischen Projektion
Literatur
Abbildungsverzeichnis
Über dieses Dokument ...
Hans-Peter Rangol
